Matériaux biomédicaux · Revue de la littérature

Pansements par électrofilage : structures fibreuses, composites fonctionnels et avancées de la recherche

Pour développer un pansement, il faut d'abord déterminer la fonction de la membrane fibreuse : recouvrir la plaie, gérer les liquides, assurer une libération locale ou soutenir la réparation en association avec d'autres matériaux. L'électrofilage permet d'intégrer ces fonctions dans la composition des fibres, la porosité et les couches composites. En s'appuyant sur des études portant sur les brûlures, les plaies chroniques et les sites de prélèvement cutané, cet article analyse les données disponibles et leur contribution à la définition des échantillons par les chercheurs et développeurs.

Synthèse par TONGLI6 études représentatives

Cet article retient 6 études originales publiées entre 2017 et 2024, issues d’équipes chinoises, grecques, norvégiennes et israéliennes, dans le cadre d’une revue narrative orientée vers les applications. La littérature couvre les matériaux et l’évaluation in vitro, les expérimentations animales ainsi qu’un essai randomisé chez l’homme portant sur une zone de prélèvement cutané ; elle ne constitue pas une comparaison exhaustive de toutes les techniques de pansements.

01Quels problèmes les pansements doivent-ils résoudre ?

Les besoins varient selon le type de plaie. Pour les brûlures, le recouvrement se concentre sur la restauration de la barrière et l'état cutané ; les études sur les plaies diabétiques examinent souvent simultanément l'inflammation, l'angiogenèse et la réépithélialisation ; les sites de prélèvement cutané nécessitent d'observer l'irritation, la douleur, la cicatrisation et les cicatrices après recouvrement. Définir le contexte d'utilisation avant de choisir les matériaux permet d'éviter d'extrapoler les résultats d'un modèle animal à tous les types de plaies.2,3,4,6

Structures des pansements et approches d'évaluation
Contextes d'étudeFonctions pouvant être assurées par la couche fibreuseAspects à considérer simultanément
Brûlures et plaies superficiellesRecouvrement, rétention d'eau et composites à base de macromolécules naturellesÉchanges hydriques, réactions locales et régénération cutanée 3
Plaies liées au diabèteChargement médicamenteux, libération stimulée et soutien par des couches fonctionnellesInflammation, réépithélialisation, vascularisation et reconstruction tissulaire 4
Couverture de la zone donneuse de peauFormation d’une couche de couverture fibreuse temporaire bien ajustéeStimulation, douleur, délai de cicatrisation et cicatrices ultérieures 6

Pour les développeurs de pansements, « filer une couche de fines fibres » n’est qu’un point de départ. La facilité de manipulation de la membrane, sa capacité à rester intacte au contact des liquides, ainsi que la nécessité d’une couche absorbante ou d’un support externe déterminent sa place au sein d’un pansement complet. Les membranes isolées, les éponges fibreuses et les membranes composites à base d’hydrogel décrites dans la littérature correspondent en réalité à différentes problématiques de structure de produit.1,4,5

02Comment les membranes fibreuses sont associées à des macromolécules naturelles et à des composants actifs

L’électrofilage utilise généralement des polymères filables pour constituer une charpente, à laquelle sont ensuite ajoutés des composants tels que la gélatine, la séricine ou les polysaccharides d’algues afin d’ajuster l’interface. Les macromolécules naturelles peuvent à la fois participer aux interactions cellulaires et modifier l’état de la solution, le comportement au contact des liquides et la résistance mécanique. Par conséquent, les proportions des matériaux doivent être étudiées conjointement avec la filabilité, le post-traitement et l’utilisation à l’état humide ; il n’est pas possible de déduire les performances du produit final du seul qualificatif « naturel ».1,2,3,5

Membranes planes, éponges tridimensionnelles et couches composites

Les membranes fibreuses planes facilitent la couverture et le criblage des formulations ; l’assemblage ultérieur des fibres en éponge permet d’étudier un environnement tridimensionnel plus ouvert ; l’ajout d’hydrogel sur les fibres permet de séparer le support des fonctions locales. Le choix de la forme dépend de la volonté de maintenir les cellules à la surface, de les faire pénétrer à l’intérieur du matériau ou de confier principalement la couverture à la couche fibreuse.1,4

03Étude des macromolécules naturelles : de la couverture cutanée à l’environnement de réparation locale

Étude de la couverture des brûlures par Ulvan et la gélatine

Terezaki et d’autres travaux de 2022 ont préparé des patchs électrofilés à partir de polysaccharides d’Ulva ulvan et de composants tels que la gélatine marine, puis ont comparé différentes combinaisons dans un modèle de brûlure du second degré chez la souris sans poils. Outre la surface de la plaie, l’étude a mesuré la perte d’eau transépidermique, l’état hydratation et les modifications histologiques ; certaines proportions ont montré une meilleure réduction précoce de la contraction et de l’inflammation.3

La valeur de cette étude réside dans la mise en relation entre la « couverture par un matériau » et la restauration de la barrière cutanée, ainsi que dans la comparaison des formulations. Elle justifie la poursuite des recherches sur les modes de combinaison des macromolécules marines, mais les résultats sont limités par les proportions et le modèle utilisés ; il ne peut donc pas être conclu que n’importe quelle fibre de ulvan ou de gélatine produira le même effet.3

Combinaison d’une éponge fibreuse avec des facteurs de croissance endogènes

Li et d’autres travaux de 2017 ont constitué une éponge hydrogel électrofilée à partir d’un polysaccharide EUP3 capable de se lier à PDGF-BB et de la gélatine, afin d’explorer l’enrichissement local de facteurs de croissance endogènes sur la plaie et leur libération au fur et à mesure de la dégradation du matériau. L’étude, combinant des essais in vitro et l’observation de défauts cutanés de pleine épaisseur chez la souris, a rapporté des améliorations liées à l’angiogenèse et à la réparation tissulaire.1

Cela propose une approche matérielle différente de l’ajout direct de facteurs de croissance exogènes : réguler l’environnement par l’interaction entre le matériau et les biomolécules locales. Lors du développement d’échantillons similaires, il convient de vérifier séparément la capacité de liaison, le comportement de libération et les performances finales de réparation ; les essais d’adsorption ne sauraient se substituer aux études animales ou humaines.1

04Comment les fibres chargées de médicaments participent-elles à l’étude de l’inflammation et des plaies chroniques

PLGA, séroïne et artémisinine

Peng et al. ont étudié en 2021 des membranes de séroïne électrofilées contenant de l’artémisinine, dans le cadre de PLGA/, en évaluant la libération, la biocompatibilité ainsi que les indicateurs liés à l’inflammation, puis en observant la réparation sur un modèle de plaie full-épaisseur chez le rat. Les résultats suggèrent que ce système composite peut influencer le processus inflammatoire ; l’intérêt de l’étude réside dans la mise en relation entre la libération du médicament et la réponse tissulaire.2

Répartition des fonctions entre les fibres à réponse stimuli et les hydrogels conducteurs

Cao et al. ont imprimé, en 2022, des bandes d’hydrogel conducteur sur des membranes de fibres de polyuréthane chargées de doxycycline et sensibles à l’environnement riche en espèces réactives de l’oxygène. Des essais in vitro ont évalué la libération et le comportement cellulaire ; des essais sur des rats diabétiques ont ensuite examiné l’inflammation, le collagène, la vascularisation et la ré-épithélialisation. La structure combinée a démontré un effet réparateur dans ce modèle, indiquant que la couche électrofilée et la couche imprimée peuvent assumer conjointement des fonctions distinctes.4

Ces deux travaux se situent tous deux au stade de la validation animale. Ils incitent les chercheurs à sélectionner les fonctions en fonction de problèmes biologiques précis, plutôt qu’à accumuler continuellement des principes actifs. Plus le nombre de couches composites est élevé, plus il est nécessaire de prévoir des groupes de composants isolés et des groupes combinés, afin de déterminer clairement l’origine des modifications observées.2,4

05Phases aqueuses et électrofilage sans aiguille : enseignements pour l’industrialisation de la préparation

Schulte-Werning et al. ont comparé, en 2024, plusieurs systèmes polymériques en phase aqueuse, puis ont sélectionné de la pectine/PEO pour encapsuler des liposomes contenant du chloramphénicol, en recourant à l’électrofilage linéaire sans aiguille. L’étude a examiné la formation des fibres, les propriétés mécaniques, l’état des liposomes, la libération in vitro, l’activité antibactérienne et la biocompatibilité ; la combinaison avec les liposomes a modifié le processus de libération par rapport à un chargement direct.5

L’enseignement pour le passage de la R&D à la production est de prendre simultanément en compte les solvants et les méthodes de formation de film disponibles lors de l’étude des fonctions actives. Cet article démontre la faisabilité sur le plan des matériaux et in vitro ; il ne faut pas interpréter l’expression « adapté à la discussion sur l’industrialisation » comme signifiant que la validation de la production du produit a déjà été réalisée. Les systèmes hydrosolubles doivent également faire l’objet d’une évaluation de l’emballage contre l’humidité, de l’intégrité au contact du liquide et de l’uniformité entre les lots.5

06Quelles questions les études humaines ont-elles déjà répondues

Haik et al. ont publié en 2022 une étude prospective, multicentrique, randomisée et ouverte, comparant le traitement des zones donneuses de greffe cutanée par recouvrement électrofilé in situ et par recouvrement conventionnel. Les deux groupes comptaient respectivement 21 et 20 participants ; l’étude a évalué l’irritation cutanée, la ré-épithélialisation, la douleur, les événements indésirables, et a prolongé le suivi pour observer notamment les cicatrices.6

Le rapport indique que le score d’irritation cutanée était plus faible dans le groupe électrofilé le premier jour postopératoire, mais que cette différence ne s’est pas maintenue par la suite ; le temps moyen de ré-épithélialisation était similaire dans les deux groupes, et aucune différence significative n’a été observée pour plusieurs autres critères. Ce travail fournit des données humaines de faisabilité et de contrôle pour un contexte précis de zone donneuse de greffe, tout en soulignant que la valeur de l’évaluation ne doit pas se limiter à une « guérison plus rapide ». Il ne valide ni les formulations chargées de médicaments mentionnées précédemment, ni celles destinées aux plaies diabétiques, et ne peut être généralisé à toutes les plaies.6

07Passer des protocoles de la littérature à des échantillons de pansements reproductibles

Définir la fonction de la couche de fibres dans l’ensemble du pansement

Lors de la description d’un échantillon, il convient d’indiquer d’abord le type de plaie, si la membrane est en contact direct avec la plaie, si elle est associée à un substrat absorbant, la durée de maintien souhaitée et les modalités de retrait. Ensuite, préciser la surface, l’épaisseur ou la densité surfacique de la membrane, ainsi que ses propriétés mécaniques et son apparence après imprégnation de liquide, afin de fixer des objectifs comparables pour l’apport de liquide, la collecte et la configuration des couches.

Associer les essais fonctionnels aux conditions d’utilisation réelles

Outre la morphologie des fibres, il est possible de comparer, en fonction de l'application, l'absorption et le transport des liquides, la résistance à l'état humide, les courbes de libération, la liaison inter-couches et le comportement lors du retrait. Pour les échantillons contenant des principes actifs, des liposomes ou des protéines, il convient également de vérifier l'état des composants actifs après préparation et stockage. La biocompatibilité des matériaux, les résidus et les effets de la stérilisation doivent être validés pour chaque système spécifique et ne peuvent être remplacés par les paramètres de l'équipement.2,3,4,5

Après augmentation de la surface, vérifier à nouveau l'uniformité.

Lors du passage d'un petit échantillon à une plus grande surface, les lots de matériaux, l'état de la solution, l'alimentation, la température et l'humidité, la vitesse de collecte et le post-traitement doivent être consignés et mis en correspondance avec les résultats des tests. En particulier pour les structures chargées ou stratifiées, des échantillons doivent être prélevés en plusieurs points afin de confirmer les variations de teneur, de densité surfacique et de liaison inter-couches.

Lors de la lecture des formulations dans la littérature, il convient également de noter la base de calcul des dosages indiqués dans les articles : qu'ils soient calculés en fonction de la concentration de la solution, de la masse du polymère ou de la masse totale de la membrane, cela influencera la compréhension de la charge ; le pourcentage de libération doit également être mis en correspondance avec le temps de prélèvement et le milieu. Pour une même formulation, il est possible de fixer d'abord la surface et la masse de l'échantillon, puis de comparer la libération et le comportement à l'état humide de différentes structures. Une telle comparaison permet d'identifier plus facilement les facteurs qui influencent réellement l'échantillon.2,4,5

L'évaluation en phase de R&D doit également se rapprocher progressivement des conditions d'utilisation réelles. Pour les membranes nécessitant un découpage, il faut observer si des fibres se détachent ou si des délaminages apparaissent après découpage ; pour les membranes destinées à être appliquées sur des surfaces courbées, il convient de vérifier leur flexibilité et leur intégrité à l'état humide ; lorsqu'elles doivent être utilisées avec une couche absorbante, le transport des liquides doit être testé sur l'assemblage complet. Il s'agit de points de contrôle des échantillons déduits de l'application, qui ne peuvent être remplacés directement par les résultats d'articles portant sur des membranes monocouches.

08Problèmes courants dans le développement des pansements pour plaies

Les pansements à base de nanofibres nécessitent-ils impérativement des agents antibactériens ?

Pas nécessairement. Des études ont respectivement porté sur le recouvrement temporaire, l'interface avec des polymères naturels, l'enrichissement en facteurs endogènes et l'administration locale de principes actifs. L'ajout d'un médicament doit être décidé en fonction de l'objectif d'utilisation et des résultats de validation ; une inhibition bactérienne in vitro ne peut être directement assimilée à une réduction des infections cliniques.1,3,5,6

Peut-on ajouter directement une couche électrofilée sur un non-tissé existant ?

Cette possibilité peut être abordée dans le cadre de la préparation de l'échantillon, mais il est nécessaire de définir clairement les rôles respectifs du substrat, de la couche électrofilée et du mode de liaison. Les performances globales du pansement en matière de perméabilité aux liquides, de perméabilité à l'air et de propriétés mécaniques doivent être évaluées après la réalisation du composite.

Comment entamer la discussion sur la configuration de l'équipement ?

Il suffit de fournir des informations sur le système de matériaux, le solvant, la présence éventuelle d'un principe actif, la morphologie souhaitée pour la membrane et les dimensions de l'échantillon. En phase initiale, il est possible de commencer par établir des enregistrements pour la comparaison des formulations et la formation stable de la membrane, avant d'aborder le stratification, la collecte continue et les plus grandes surfaces.

Références

Voici les études originales sélectionnées pour cet article. L'interprétation de la littérature n'implique aucune relation d'achat d'équipements ou de coopération entre les auteurs des articles, les institutions de recherche et TONGLI ; les résultats présentés ne s'appliquent qu'aux matériaux, modèles et conditions expérimentales décrits dans les textes originaux.

Les références bibliographiques conservent la langue de publication d’origine pour faciliter leur vérification.

  1. Li Q, et al. In situ sequestration of endogenous PDGF-BB with an ECM-mimetic sponge for accelerated wound healing. Biomaterials. 2017;148:54–68.

    DOI:10.1016/j.biomaterials.2017.09.028 ↗

    Champ de lecture : lecture intégrale locale de l'article original, méthodes et résultats pertinents, ainsi que vérification de la bibliographie publiée

  2. Peng Y, et al. Electrospun PLGA/SF/artemisinin composite nanofibrous membranes for wound dressing. International Journal of Biological Macromolecules. 2021;183:68–78.

    DOI:10.1016/j.ijbiomac.2021.04.021 ↗

    Champ de lecture : lecture intégrale locale de l'article original, méthodes et résultats pertinents, ainsi que vérification de la bibliographie publiée

  3. Terezaki A, et al. Ulvan/gelatin-based nanofibrous patches as a promising treatment for burn wounds. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 2022;74:103535.

    DOI:10.1016/j.jddst.2022.103535 ↗

    Champ de lecture : lecture intégrale locale de l'article original, méthodes et résultats pertinents, ainsi que vérification de la bibliographie publiée

  4. Cao W, et al. A nanofibrous membrane loaded with doxycycline and printed with conductive hydrogel strips promotes diabetic wound healing in vivo. Acta Biomaterialia. 2022;152:60–73.

    DOI:10.1016/j.actbio.2022.08.048 ↗

    Champ de lecture : lecture intégrale locale de l'article original, méthodes et résultats pertinents, ainsi que vérification de la bibliographie publiée

  5. Schulte-Werning LV, et al. Antimicrobial liposomes-in-nanofiber wound dressings prepared by a green and sustainable wire-electrospinning set-up. International Journal of Pharmaceutics. 2024;657:124136.

    DOI:10.1016/j.ijpharm.2024.124136 ↗

    Champ de lecture : lecture intégrale locale de l'article original, méthodes et résultats pertinents, ainsi que vérification de la bibliographie publiée

  6. Haik J, et al. Advances in the Use of Electrospun Nanofibrous Polymeric Matrix for Dermal Healing at the Donor Site After the Split-Thickness Skin Graft Excision: A Prospective, Randomized, Controlled, Open-Label, Multicenter Study. Journal of Burn Care & Research. 2022;43(4):889–898.

    DOI:10.1093/jbcr/irab216 ↗

    Périmètre de lecture : résumé et bibliographie originaux de PubMed ; rapport d'essai complet non relu

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