生物医用材料 · 文献レビュー

エレクトロスピニングによる眼科および角膜修復材料:細胞担体、透明構造、研究の進展

眼科用繊維膜は、角膜縁細胞の培養・送達担体、基質の配向を誘導する足場、または角膜内皮細胞を載せる薄膜となり得ます。それぞれの用途では、形状、透明度、湿潤状態での取り扱いに関する要件が異なります。本稿では代表的な研究を基に、エレクトロスピニングがこれらの構造の作製にどのように関与するか、またどのような観察が次のサンプル開発を裏付けうるかを紹介します。

TONGLIによる編集6件の代表的な研究

本稿では2011年から2026年までに発表された6件の原著研究を選定し、米国、英国、中国、韓国、インドなどの研究チームが関与した成果を網羅して叙述的レビューを行う。内容はTONGLIが公開文献に基づき独自にまとめたものであり、細胞培養、摘出眼球実験、生体動物研究を区別し、商業製品については評価しない。

01まず角膜縁基質と内皮の材料要件を区別する

同じく角膜修復膜と呼ばれていても、実際には異なる役割を担うことがあります。角膜縁および眼表面の担体は細胞の接着、伸展、送達に重点を置きます。基質足場は繊維と細胞外基質の組織化の仕方に重点を置きます。内皮担体は細胞層を保持し、透過性と取り扱いを考慮する必要があります。研究開発の初期段階で対象となる組織層を明確にすることで、ある細胞から得られた結果を別の用途に安易に当てはめる事態を避けられます。1,2,3,4,5,6

眼科および角膜修復における構造と評価の考え方
応用分野サンプル形状文献における重点事項
角膜縁および眼表面の細胞担体薄膜、微細構造を持つ環状担体、複合羊膜細胞伸展、湿潤状態での完全性、および送達 3,4,6
角膜基質の組織工学配向繊維と層状培養基盤細胞表現型、コラーゲン配向、および光散乱 1,2
角膜内皮細胞担体薄く、取り扱い可能な透光膜細胞接着関連マーカー、透過性、および離体での付着 5

これらの用途において、エレクトロスピニングは培養表面を直接形成することも、他の材料の強化層として機能することもできます。膜自体の透明度、細胞の生存能力、および完全な角膜が視覚機能を回復させることは、それぞれ異なるレベルの問題であり、対応する観察方法が必要で、互いに代替することはできません。

02エレクトロスピニングは角膜材料としてどのような構造の選択肢を提供しますか。

既存の研究では、コラーゲン、ゼラチン、生分解性ポリマーを用いて繊維層を構築し、コレクターによって配向を変化させ、テンプレートによって微細構造を形成し、あるいは天然組織基質と複合させています。処方や構造が細胞の接触界面を共同で決定し、膜の厚さ、吸水後の形状、および後処理も最終的な使用方法に影響を与えます。1,2,3,4,5,6

配向繊維と微細構造テンプレートは、それぞれ異なる問いに答える

配向繊維は主に微細な配向の手がかりを提供し、細胞や新生基質が特定の方向に沿って組織化されるかを比較するのに適しています。一方、微細な溝やマイクロキャビティを持つテンプレートは、細胞が存在する空間を配置するために用いられます。両者は別々に研究することができ、最初のサンプルで全ての構造を同時に組み込む必要はありません。2,3

透光性と湿潤状態での安定性は、一体的に設計する必要がある

厚さを減らすと取り扱いの強度が変化し、繊維間隔を調整すると細胞の被覆や物質の通過に影響が出る可能性があります。架橋や共混は吸水後の形状を変化させる可能性もあります。したがって、より有用な比較対象は、後処理を施し、実際の条件下で湿潤させた最終的な膜片であり、単に回収されたばかりの乾燥状態の繊維ではありません。5,6

03角膜基質研究:細胞配列から新生基質組織まで

Phuらは2011年、ウサギ由来の角膜線維芽細胞を配向性および非配向性のⅠ型コラーゲン繊維上で比較し、同時に筋線維芽細胞表現型に関連するα-SMAと光散乱を調査した。配向性足場群は、このin vitro条件下で関連マーカーの発現および光散乱が低かった。この研究は、評価が細胞数にとどまらず、その表現型や光学的特性の観察にも拡張できることを示している。1

Wuらは2012年、配向性ポリエステルウレタン(PEUU)繊維を用いてヒト角膜基質幹細胞を培養した。細胞は配向性基質上でより整然としたコラーゲン基質を形成した。ランダム繊維または平坦なフィルム上の細胞も基質を形成したが、その組織化様式は異なっていた。このin vitro研究は、繊維配列の役割を細胞の形状から細胞が産生する材料へと拡張した。2

両研究はまた、培養条件と基質構造をそれぞれ制御すべきであることも示唆している。配向性サンプルとランダムサンプルで面密度や厚さが同時に異なる場合、結果をすべて配向の変化に帰属させることは困難である。予備的スクリーニングでは、平坦なフィルムやランダム繊維の対照群を維持し、層間角度などの変数を段階的に増やしていく方法が考えられる。

04角膜辺縁部細胞キャリア:人工微小環境から複合フィルムまで

Ortegaらは2013年、まずマイクロ立体リソグラフィによって微細構造を持つテンプレートを製作し、その上にPLGA繊維を堆積させて、マイクロカプセル状のポケットなどを特徴とする環状キャリアを得た。ウサギの角膜辺縁部上皮細胞および基質細胞を用いて予備的評価を行い、細胞を収容できる人工微小環境の構築を試みた。これは製作およびin vitro研究であり、完全な角膜を代替できることがすでに証明された材料ではない。3

Zhouらは2019年、別のアプローチとして、PCLナノファイバー網と脱細胞羊膜を界面結合させ、材料の機械的特性と縫合保持性を向上させると同時に、羊膜の生物学的機能を維持した。アルカリ熱傷によって角膜辺縁部幹細胞が欠損したウサギモデルにおいて、この複合フィルムは細胞移植を支持し、再上皮化、炎症、および新生血管形成の改善が観察された。ここでの修復結果は生体動物におけるエビデンスに属する。4

これら2つのアプローチは、異なる研究開発の出発点に対応している。すでに細胞培養のプロセスを有するチームは、テンプレートと細胞分布を研究できる。一方、すでに天然の膜材料を有するチームは、繊維による強化層および界面結合を研究できる。後者では特に、強化後のフィルムの操作上の改善と、細胞が産生する修復効果を区別し、複合システム全体の効果をエレクトロスピニング層のみに帰属させないことが必要である。

05なぜ湿潤状態での安定性が角膜キャリアの重要な問題となるのか

Villanueva Navarreteらは2026年、PLGAキャリアが湿潤後に示す完全性と操作性の問題について、異なるPLGA/PCL組成を比較した。論文で試験された系において、30%のPCLを含む処方は、乾燥時と湿潤時の両方で機械的特性を良好に維持し、ヒトおよび豚の角膜辺縁部組織ブロックからの細胞の外部への成長を支持した。これは組織ブロックの培養と材料評価であり、ヒト由来組織を使用したからといって、患者への移植が実施されたことを意味するものではない。6

この研究は、顕微鏡画像では見過ごされやすい問題を具体化した。細胞はフィルム上で成長できても、フィルムが移動、展開、または湿潤後に操作しにくくなれば、キャリアの使用は依然として制限される。この配合比は、当該材料の仕様と実験条件下での結果であり、すべてのPLGA/PCL角膜フィルムに適用すべき固定された処方ではない。6

06内皮細胞キャリア:薄膜は透光性、透過性、およびデリバリーを同時に考慮する必要がある

Songらは2024年、ゼラチンをエレクトロスピニングしてナノファイバーフィルムを作成し、架橋処理を行った後、その透光性、機械的特性、透過性、および分解挙動を研究した。著者らはヒトおよびウサギの角膜内皮細胞を培養し、細胞間接合と機能関連マーカーを観察し、新鮮な摘出ウサギ眼でのデリバリーおよび貼付実験も行った。この論文は、フィルムが内皮細胞キャリアとして機能する可能性を示したが、生体動物における長期的な有効性やヒトの視力改善に関する研究ではない。5

内皮キャリアの設計目標は、眼表面のカバーフィルムとは異なる。薄膜の操作、細胞層の保持、および物質交換の間の調整が必要である。将来的に角膜の水分調節機能の回復を評価したい場合は、対応する機能試験および疾患モデルが必要であり、マーカー発現のみに基づいて判断することはできない。本稿で選択された研究だけでは、これらのエレクトロスピニング角膜材料のヒトにおける有効性について結論付けるには不十分である。

眼科材料開発にとって、in vitro実験の価値は、培養フィルムを実際のデリバリーにより近い空間的・操作的条件下で検証できる点にある。これは単なる培養よりも多くの問いに答えるが、依然として生体内での長期的な分解、炎症、および組織との相互作用に関する情報は不足している。読解にあたっては、この段階的な限界を認識しておくべきである。

07文献のアプローチから再現可能な眼科用繊維フィルムサンプルへ

まず細胞とフィルムの役割を確定する

まず、目標が培養基質、細胞デリバリーフィルム、または組織修復足場のいずれかであるかを明確にし、その上で細胞の種類、培養時間、フィルムサイズ、および最終的な転写法を説明することができる。目標が異なれば、厚さ、分解性、透明度の優先順位も変わり、環状、配向性、または多層の収集構造が必要かどうかも決まる。

同一条件下で光学的特性と構造を比較する

透光性試験では、サンプルの厚さ、乾燥・湿潤状態、測定波長、および参照を記録し、必要に応じて透光と光散乱を区別すべきである。細胞を含むサンプルについては、フィルム自体の寄与と、細胞または新生基質の寄与も区別する必要がある。文献にある特定の透光値は、これらの条件を無視して製品目標として直接使用することはできない。1,5

後処理と最終サンプルを関連付ける

架橋、洗浄、乾燥、および滅菌は、フィルムの構造や細胞との接触界面を変化させる可能性がある。各工程を最終的な厚さ、湿潤時の寸法、および細胞評価と対応させて記録し、具体的な材料系に応じて残留物や生体適合性を検証することができる。製造面積を拡大した後は、有効領域内の均一性や裁断後の完全性も確認する必要がある。

装置に関する協議は、安定した供給液、薄膜の堆積、配向性収集、テンプレートの適合性、および環境制御を中心に展開することができる。サンプルの要求が具体的であるほど、エレクトロスピニングが独立したフィルム、天然基材の強化層、または複合組織構造のいずれの部分を担うかを判断しやすくなる。

08眼科用エレクトロスピニング材料開発におけるよくある問題

エレクトロスピニングフィルムで角膜細胞を培養できれば、角膜移植に使用できるのか

細胞培養は、特定の条件下での生体適合性と成長を示すにすぎない。デリバリーや移植後の反応、および機能回復については、異なる段階での検証が必要である。本稿における基質培養、in vitroでの内皮細胞デリバリー、およびウサギ眼表面での修復は、それぞれ異なる問いに答えるものである。2,4,5

眼科材料は、フィルム全体が完全に透明である必要があるのか

設置部位と用途に応じて判断すべきである。角膜基質の代替、角膜辺縁部の環状キャリア、および短期的な細胞デリバリーフィルムでは、設計要件が異なる。まず光学的に重要な領域、保持時間、および目標機能を決定し、その上で光学的評価を設定する方が、単に薄膜の外観上の透明性を追求するよりも有意義である。1,2,3,5

すでに天然の膜材料がある場合でも、エレクトロスピニングと組み合わせることができるのか

繊維を強化層や細胞接触層として研究することができる。複合羊膜に関する研究はその一例であるが、単に2つの材料を積層するのではなく、界面結合、湿潤時の操作性、および生物学的機能が保持されているかを同時に検証する必要がある。4

参考文献

以下は本稿で用いた原著研究である。文献[1,3,5,6]は全文の関連章と合わせて精読し、[2,4]は原著要旨および書誌情報に基づき整理した。本研究の解釈は、論文の著者、所属機関とTONGLIとの間に装置の購入または協力関係が存在することを示すものではない。

検索・照合のため、書誌情報は原著の言語で記載しています。

  1. Phu D, Wray LS, Warren RV, et al. Effect of Substrate Composition and Alignment on Corneal Cell Phenotype. Tissue Engineering Part A. 2011;17(5–6):799–807.

    DOI:10.1089/ten.tea.2009.0724 ↗

    閲覧範囲:PMC原著全文の要旨、方法および結果に関する章

  2. Wu J, Du Y, Watkins SC, et al. The engineering of organized human corneal tissue through the spatial guidance of corneal stromal stem cells. Biomaterials. 2012;33(5):1343–1352.

    DOI:10.1016/j.biomaterials.2011.10.055 ↗

    閲覧範囲:PubMed原著要旨および著者所属機関の文献記録

  3. Ortega Í, Ryan AJ, Deshpande P, et al. Combined microfabrication and electrospinning to produce 3-D architectures for corneal repair. Acta Biomaterialia. 2013;9:5511–5520.

    DOI:10.1016/j.actbio.2012.10.039 ↗

    閲覧範囲:現地の原著全文要旨、製造方法および結論

  4. Zhou Z, Long D, Hsu CC, et al. Nanofiber-reinforced decellularized amniotic membrane improves limbal stem cell transplantation in a rabbit model of corneal epithelial defect. Acta Biomaterialia. 2019;97:310–320.

    DOI:10.1016/j.actbio.2019.08.027 ↗

    閲覧範囲:PubMed原著要旨および書誌情報

  5. Song E, Chen KM, Margolis MS, et al. Electrospun Nanofiber Membrane for Cultured Corneal Endothelial Cell Transplantation. Bioengineering. 2024;11(1):54.

    DOI:10.3390/bioengineering11010054 ↗

    閲覧範囲:原著要旨および公開全文の序論、方法、結論。ex vivoの実験であることを照合確認

  6. Villanueva Navarrete D, Sandoval-Castellanos AM, Gunen M, et al. Wet-stable PLGA–PCL electrospun membranes as synthetic scaffolds for corneal applications. Biomedical Materials. 2026;21(2):025033.

    DOI:10.1088/1748-605X/ae57f1 ↗

    閲覧範囲:著者所属機関が保存する正式な全文要旨、方法、結果および結論

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